Loomade immuunfunktsiooni tuvastamise meetodid

Hiliste juuste{0}}allergiliste reaktsioonide in vitro testimismeetodid Nahatestimine ja kontaktallergia esilekutsumine on kaks levinumat meetodit hiliste juuste-indutseerivate allergiliste reaktsioonide (DTH) tuvastamiseks.

Nahatestides kutsuti esile vastu{0}}reaktsioon antigeenidele, mis olid muutnud patsiendi tundlikuks, ja kontaktallergia oli võime testida retsipiendi võimet olla tundlik ainete suhtes, millega pole kunagi kokku puututud. 1. Nahatesti koos nahatesti diagnoosiga DTH, tavaliselt kasutatavatel antigeenidel on TB bakterid, puhtad valgu derivaadid, inimese viirus, in, mudempiini test jne. küünarvarre naha süstimine väikese koguse lahustuva antigeeniga, 24–48 väikest, mõõta punaste ja paistes kõvade sõlmede suurust, kõva sõlme läbimõõt on suurem kui 10 mm loetakse positiivseks. See näitab, et katsealusel on teatav rakuline immuunsus patogeeni suhtes, kui nahatest ei reageeri, võib kasutada suurema kontsentratsiooniga antigeeni kordustesti, kui ikka ei ole negatiivset vastust, on vaja välistada nahatesti tehniline viga, võib olla ka katsealune ei ole kunagi selle antigeeniga kokku puutunud, võib olla tingitud ka raku immuunfunktsiooni puudulikkusest või rakulise immuunfunktsiooni puudulikkusest,

või raskete infektsioonide (leetrid, krooniline difuusne tuberkuloos) tõttu -reaktiivne. 2. Kontaktallergia puhul kasutatakse sageli madala molekulmassiga ühendeid, nagu dinitroolklorobenseeni (DNCB) põhjustatud kontaktallergia. Ühendid seostuvad nahavalkudega, et kutsuda esile DTH reaktsioone. Loomkatsetes näib nahk positiivne, kui nahk on positiivne pärast 7–10-päevast stimulatsiooni pärast esimest korda DNCB nahale kandmist.

Seda katset inimesed enam ei kasuta.

Rakuimmuunsuse in vitro tuvastamise meetod Lümfotsüütide arvu ja funktsioonide in vitro tuvastamine, vereproovide võtmine on lihtsam, ennekõike on vaja lümfotsüüdid isoleerida või puhastada, kasutades üldiselt glutalüsoon-panfotoonset glutamiini osakaaluga 1,077 lümfotsüüdi kihistusvedelikku, kui veri kattub üle lümfotsüütide (punaste lümfotsüütide kihistumise tõttu9). polümorfsed tuuma valged verelibled (peamiselt 1,090), lümfotsüütide proportsioonid (1,070) on erinevad ja üksteisest eraldatud. Lümfotsüüdid ja monotsüüdid moodustavad plasma ja kihistumise ristumiskohas õhukese kihi.

Jagage see õhuke rakukiht, millest lümfotsüüdid moodustasid 80%, mononukleoos 20%, lümfotsüüdid 80%, B-rakud 4% kuni 10%, ettevaatlikult mitte-DT-, mitte-B-rakkudeks. ⑴ E-pärnik: inimese T-raku pinnal on SRBC retseptor (CD2), mis võib seostuda SRBC-ga, moodustades roosirõngakujulise struktuuri, RBM-i suspensioon ja SRBC eraldatakse kihilise vedelikuga, mis on segatud tasakaalustatud soolalahusega, mis sisaldab seerumit, kultiveeritakse temperatuuril 37 °C 5-10 minutit lümfisuspensiooni, mõõdetakse 4-kraadist raku üleöö. umbes 70–80% lümfotsüütidest moodustavad pärjad ehk T-rakud.

Praegu on seda meetodit kasutatud T-rakkude isoleerimiseks ilma T-rakkude loendamiseta. (2) T-rakkude loendamine monoklonaalsete antikehadega: inimese PBM jagatakse kolmeks võrdseks osaks, hiirte inimese CD3-, CD4- ja CD8-vastased pre-antikehad kombineeritakse rakkudega ning seejärel kasutatakse FITC-ga märgistatud küüliku anti-hiire IgG teist antikeha, mis on märgistatud immunofluorestsentsi otseseks fluorestsentsiks. mikroskoobi või voolutsütomeetri testi tulemused, PBM cd3 antikehades värvitud fluorestseeruvad rakud, mida nimetatakse CD3-pluss rakkudeks või kogu T-rakkudeks. Normaalsed inimesed PBM T-rakkudes moodustasid 70–80%. CD4-pluss rakkude ja CD8-rakkude summa normaalsetel inimestel peaks olema kooskõlas CD3-rakkude arvuga. CD4-pluss-rakkude ja CD8-rakkude suhe on normaalsete inimeste puhul ligikaudu 2/1, samas kui AIDS-i patsientide suhe on alla 1,7.